一套用于水稻的人工基因编辑系统
1.本技术为2018年11月07日提交的发明名称为一套用于水稻的人工基因编辑系统，申请号为201811320030.8的分案申请。
技术领域
2.本技术涉及一套用于水稻的人工基因编辑系统。


背景技术：

3.水稻(oryza sativa l.)是世界主要粮食作物之一，养活了世界上近一半人口，包括几乎整个东亚和东南亚的人口。中国是世界上水稻总产量最高的国家，水稻产量占全球总量的30％左右。在生产过程中，以稻瘟病、稻曲病和纹枯病为主的水稻三大病害严重制约着水稻的生长发育，导致水稻产量和品质降低，威胁着全球的粮食安全。因此，提高产量，改善稻米品质，增加水稻植株抗病、抗逆性等研究以保证粮食的稳定供给是人类社会可持续性发展的重大课题。水稻作为单子叶植物的模式植物，其研究技术、方法、理论和成果对其它禾本科植物，如小麦、玉米、高粱等具有重要指导作用。
4.近年来发展起来的crispr/cas9系统因为可以对基因组进行定点修饰而极具应用性。不过crispr/cas9系统在进行核酸切割时，需要识别引导rna(grna)3’端保守的pam序列。现在最常用的spcas9所识别pam序列主要是ngg，尽管spcas9也可识别nag，以及spcas9(vqr)可识别nga等，但其编辑效率均较低；同时基于crispr/spcas9系统发展而来的碱基编辑技术也会因所编辑靶位点的特殊性及可能没有合适的pam序列导致碱基编辑效率受到限制，这些都在很大程度上限制了crispr/cas9系统在水稻基因组编辑中应用。
5.因此，如果能开发出一种可更高效、适用范围更广、通用性更强、dna特异性更强的对植物基因组，特别是水稻基因组进行定点编辑的crispr/cas9系统，不仅会大大提高对植物基因组编辑的效率，而且将被更广泛的应用于植物基因功能研究、作物育种等方面，将会极大地促进植物基因组编辑领域的进程。


技术实现要素：

6.本技术提供了一套人工基因编辑系统，所述人工基因编辑系统包括：
7.第i调节元件，其包括能够编码如氨基酸序列i的核苷酸序列；其中所述氨基酸序列i包括如i-1氨基酸序列、i-2氨基酸序列和i-3氨基酸序列中的一种，其中所述i-1氨基酸序列为如seq id no.1所示的氨基酸序列；所述i-2氨基酸序列包括依次从n端到c端串联的seq id no.2、seq id no.1和seq id no.3所示的氨基酸序列；所述i-3氨基酸序列包括依次从n端到c端串联的seq id no.4和seq id no.1所示的氨基酸序列；
8.第ii调节元件，其包括依次从5’端到3’端串联的第ii-1核苷酸序列和第ii-2核苷酸序列；所述第ii-1核苷酸序列包括靶核苷酸序列；所述靶核苷酸序列来源于目标生物的基因组中，并且所述靶核苷酸序列中含有目标生物基因组中待突变的靶位点；所述第ii-2核苷酸序列包括来源于化脓链球菌(streptococcus pyogenes)的sgrna核酸序列；所述第
ii-1核苷酸序列和所述第ii-2核苷酸序列转录融合，其产物能引导第i调控元件编码的蛋白至目标生物基因组中待突变的靶位点处，并将靶位点处产生碱基进行突变；
9.当所述第ii调节元件为多个时，包含在每一个所述第ii调节元件中的第ii-1核苷酸序列两两不相同。另外，当所述第ii调节元件为多个时，这些第ii调节元件可以串联的形成连接在一起。
10.本技术中，人工基因编辑系统中的靶核苷酸序列由该人工基因编辑系统本身与目标生物基因组中的待突变的靶位点共同确定，并且，如上所述，靶核苷酸序列来源于目标生物的基因组中，因此，靶核苷酸序列上的所述靶位点与目标生物基因组中的待突变的靶位点序列一致，因此，为了表述简便起见，两者均称之为靶位点，但突变发生在目标生物的基因组的序列上，而非发生在人工基因编辑系统的序列上。
11.在一个具体实施方式中，当使用所述i-1氨基酸序列时，所述靶核苷酸序列中的靶位点处于所述靶核苷酸序列的从3
′
端到5
′
端方向的3至5位置中的任意一处；当使用所述i-2氨基酸序列时，所述靶核苷酸序列中的靶位点为处于所述靶核苷酸序列的从5
′
端到3
′
端方向的2至10位置中的碱基c；当使用所述i-3氨基酸序列时，所述靶核苷酸序列中的靶位点为处于所述靶核苷酸序列的从5
′
端到3
′
端方向的2至8位置中的碱基a。
12.当所述氨基酸序列i为如i-1氨基酸序列时，通过利用本技术的人工基因编辑系统，可以将水稻基因组中内源的特定位点处缺失或在其中插入一个或数个碱基，筛选得到水稻基因相应的缺失或插入突变体。对于这些缺失或插入突变体，有可能会使原基因的功能丢失，也有可能使原基因的功能发生减弱或增强，这取决于实际发生的情况，根据实际需要，选择保留或舍弃那些已完成基因序列检测的突变体。
13.或者，当所述氨基酸序列i为如i-2氨基酸序列时，当第i调节元件通过利用本技术的人工基因编辑系统，可以将水稻基因组中内源的特定碱基c定点突变为t、a或g中的一种，筛选得到水稻基因功能“矫正”突变体。或者对于其反向互补序列来讲，将g定点突变为a、t或c中的一种，筛选得到水稻基因功能“矫正”突变体，此时，使用的靶核苷酸序列为靶位点处为c那条链上的核苷酸序列。
14.或者，当所述氨基酸序列i为如i-3氨基酸序列时，通过利用本技术的人工基因编辑系统，可以将水稻基因组中内源的特定碱基a定点突变为g，筛选得到水稻基因功能“矫正”突变体。或对于其反向互补序列来讲，将t定点突变为c，筛选得到水稻基因功能“矫正”突变体，此时，使用的靶核苷酸序列为靶位点处为a那条链上的核苷酸序列。
15.在一个具体实施方式中，所述目标生物为水稻，所述第i调节元件的核苷酸序列为能够适于在水稻中表达的核苷酸序列，所述第ii调节元件的核苷酸序列为能够适于在水稻中发生转录的核苷酸序列。
16.在一个具体实施方式中，能够编码如seq id no.1所示氨基酸序列的核苷酸编码序列如seq id no.5所示。如seq id no.5所示核苷酸编码序列能够较优的在水稻中使用。
17.在一个具体实施方式中，能够编码如seq id no.2所示氨基酸序列的核苷酸编码序列如seq id no.6所示。如seq id no.6所示核苷酸编码序列能够较优的在水稻中使用。
18.在一个具体实施方式中，能够编码如seq id no.3所示氨基酸序列的核苷酸编码序列如seq id no.7所示。如seq id no.7所示核苷酸编码序列能够较优的在水稻中使用。
19.在一个具体实施方式中，能够编码如seq id no.4所示氨基酸序列的核苷酸编码
序列如seq id no.8所示。如seq id no.8所示核苷酸编码序列能够较优的在水稻中使用。
20.在一个具体实施方式中，所述第ii-2核苷酸序列如seq id no.9所示。
21.在一个具体实施方式中，所述第ii-1核苷酸序列还包括含有iis型限制性内切酶的酶切位点的克隆位点，所述靶核苷酸序列通过所述第ii-1核苷酸序列上的所述克隆位点而被克隆到其中(例如通过酶切-连接的方式将所述靶核苷酸序列连接到所述克隆位点上)，以使所述第ii-1核苷酸序列与第ii-2序列转录融合；当所述第ii调节元件为多个时，用于克隆不同靶核苷酸序列的所述iis型限制性内切酶的酶切位点两两不相同。
22.其中，由于所述靶核苷酸序列是根据碱基编辑位点而变化的，因此可以将包括事先克隆到相关位置的限制性内切酶的酶切位点在内的其他元件构建好。在使用之前，再根据碱基编辑目的将所述靶核苷酸序列通过限制性内切酶的酶切位点的切割而被克隆。当所述第ii调节元件为多个时，包含在其中的多个第ii-1核苷酸序列中的限制性内切酶的酶切位点两两不相同，如此，可以有效的保障不同的靶核苷酸顺利的被克隆到目标位置。多个靶核苷酸序列可用于目标生物基因组上的多个待突变的靶位点的碱基替换。
23.在一个具体实施方式中，优选所述克隆位点的核苷酸序列包括seq id no.10和/或seq id no.11。
24.在一个具体实施方式中，通过如下方式确定所述靶核苷酸序列：
25.1)确定水稻基因组上需要被改造的核苷酸序列；
26.2)判断步骤1)中所确定的需要被改造的核苷酸序列为基因组中的特异性序列(被改造的核苷酸序列的特异性越高，则在进行基因编辑时越准确，否则可能会产生错误识别)，
27.并根据所述第i调节元件来判断待突变的核苷酸位点的碱基发生突变后引起的改变是否符合预期；或者根据所述第i调节元件来判断待突变的核苷酸位点的反向互补碱基发生突变后引起的改变是否符合预期；
28.对于符合预期者，所述待突变的核苷酸位点即为潜在的靶位点；
29.3)在需要被改造的核苷酸序列或其反向互补序列中筛选靶标序列：向潜在的靶位点的3
′
端方向搜索以确认存在能够被所述第i调节元件编码的氨基酸序列i识别的识别模序，并且
30.当所述氨基酸序列i为如i-1氨基酸序列时，所述靶位点处于所述识别模序5
′
端上游的-3至-5的位置，由此确定的所述识别模序5
′
端上游17至21个核苷酸序列为所述靶核苷酸序列；
31.当所述氨基酸序列i为如i-2氨基酸序列时，所述靶位点处于所述识别模序5
′
端上游的-19至-11的位置，由此确定的所述识别模序5
′
端上游17至21个核苷酸序列为所述靶核苷酸序列；
32.当所述氨基酸序列i为如i-3氨基酸序列时，所述靶位点处于所述识别模序5
′
端上游的-19至-13的位置，由此确定的所述识别模序5
′
端上游17至21个核苷酸序列为所述靶核苷酸序列。
33.在一个具体实施方式中，所识别模序为5
′‑
n1gn
2-3
′
，所述靶核苷酸序列上游的17至21个核苷酸序列，淘汰含有连续五个t的核苷酸序列；其中，所述n1和n2独立地为a、g、c和t中的一种。
34.在一个具体实施方式中，所述靶核苷酸序列为如seq id no.16、seq id no.17和seq id no.18中所示的至少一种。
35.在一个具体实施方式中，所述人工基因编辑系统还包括在所述第i调节元件的5’端的能够用于水稻中的，且能够启动所述第i调节元件转录的第一启动子；和/或所述人工基因编辑系统还包括在所述第ii调节元件的5’端的能够用于水稻中的，且能够启动所述第ii调节元件转录的第二启动子。
36.在一个具体实施方式中，所述第一启动子为rna聚合酶ii型启动子；和/或第二启动子为rna聚合酶iii型启动子。
37.在一个具体实施方式中，第一启动子为seq id no.12；和/或第二启动子为seq id no.13。
38.在一个具体实施方式中，所述人工基因编辑系统还包括在所述第i调节元件的3’端的能够终止所述第i调节元件转录的第一终止子；和/或所述人工基因编辑系统还包括在所述第ii调节元件的3’端的能够终止所述第ii调节元件转录的第二终止子。
39.在一个具体实施方式中，第一终止子为seq id no.14；和/或第二终止子为seq id no.15。
40.在一个具体实施方式中，所述第i调节元件和所述第ii元件能够被克隆到至少一个载体上。例如，所述第i调节元件表达盒和所述第ii调节元件转录盒能够被克隆或整合到同一个载体上。或第i调节元件表达盒和第ii调节元件转录盒分别位于不同的载体上时，可以采用基因枪法、农杆菌侵染法或peg介导转化法将两个盒或含有两个盒的载体导入到水稻愈伤组织或原生质体细胞中。
41.在一个具体实施方式中，所述第i调节元件能够被克隆到pcambia1300上；所述第ii调节元件被克隆到入门载体pentr4上。pcambia1300为基于gateway反应并用于水稻遗传转化的双元载体，也可以使用其他类似的双元载体。
42.在一个具体实施方式中，所述第一启动子、第i调节元件和第一终止子能够被克隆到pcambia1300载体上。
43.在一个具体实施方式中，第二启动子、第ii调节元件和第二终止子被克隆到pentr4载体上。当所述第ii调节元件为多个时，其5’端的第二启动子和其3’端的终止子也为多个。即第二启动子、第ii调节元件和第二终止子形成一组，成套出现。含有不同第ii调节元件的多个组可以串联的形成连接在一起。其中，第ii调节元件的不同，主要指的是第ii-1核苷酸序列的不同。
44.在一个具体实施方式中，所述第i调节元件和所述第ii调节元件能够被整合到同一个载体上，或被分布在两个载体上一起使用。
45.本技术之二提供了一种如本技术之一中任意一人工基因编辑系统在用于水稻基因组突变中的应用。
46.本技术之三提供了一种实现水稻基因组定点编辑方法，其包括如下步骤：
47.1)将本技术之一中任意一人工基因编辑系统通过农杆菌介导、基因枪轰击或peg介导转化的方法中的一种导入到水稻愈伤组织或水稻原生质体中，然后培养获得水稻植株；
48.2)筛选获得含有所需突变的水稻植株；进一步地，所述水稻植株能够产生含有所
述突变的水稻种子。
49.在进行所述的人工基因编辑系统导入时，可以采用peg介导转化的方法，也可以采用基因枪法或农杆菌侵染法中的一种将所述的人工基因编辑系统导入到水稻原生质体或愈伤组织中，这是本领域技术人员容易理解的。本领域的技术人员公知，水稻基因组dna由两条链组成，因此，所述靶核苷酸序列可以在其中互补的任意一条链上。例如，当所述靶核苷酸序列位于某一功能基因的一正义链中时，如果在该功能基因的特定位点上发生一至数个碱基的缺失或插入，并且如果其中的一种突变能够获得预期的使该基因移码突变而产生基因失活，则可以采用此系统来实现，即可以通过直接进行正义链上的碱基缺失或插入，得到水稻基因敲除突变体；当所述靶核苷酸序列位于某一功能基因的正义条链中时，如果该功能基因的特定位点上的c被定点突变为t后，并且如果其中的一种突变能够获得预期的其对应的功能蛋白中的氨基酸，则可以采用此系统来实现，即可以通过直接进行正义链上的碱基替换来实现三联体密码子中的c替换为t，得到水稻基因功能“矫正”突变体；或当所述靶核苷酸序列位于某一功能基因的反义链中时，如果该功能基因的特定位点上的g被定点突变为a后，并且如果其中的一种突变能够获得预期的其对应的功能蛋白中的氨基酸，也可以采用此系统来实现，即可以通过将反义链中的c被定点突变为t，进而使正义链中的相应互补的g替换为a来改变正义链中的所述三联体密码子编码氨基酸，得到水稻基因功能“矫正”突变体；当所述靶核苷酸序列位于某一功能基因的反义链中时，如果该功能基因的特定位点上的t被定点突变为c后，并且如果其中的一种突变能够获得预期的其对应的功能蛋白中的氨基酸，则可以采用此系统来实现，即可以通过将该反义链中的a被定点突变为g，进而使正义链中的相应互补的t替换为c来改变正义链中的所述三联体密码子编码氨基酸，得到水稻基因功能“矫正”突变体；或当所述靶核苷酸序列位于某一功能基因的正义链中时，如果该功能基因的特定位点上的a被定点突变为g后，并且如果其中的一种突变能够获得预期的其对应的功能蛋白中的氨基酸，也可以采用此系统来实现，即可以通过直接进行正义链上的碱基替换来实现三联体密码子中的a替换为g，从而得到水稻基因功能“矫正”突变体。
50.本技术的有益效果在于：
51.a)第ii调节元件可以为多个，这样可以同时编辑水稻细胞内多个基因靶位点。
52.b)通过选用本技术的人工基因编辑系统中不同的第i调节元件可实现了对水稻基因组中的基因敲除(包括缺失或插入)，或从碱基对at到碱基对gc的替换，或从碱基对gc到碱基对at的替换。
53.c)该全新基因编辑工具盒扩展了已有基因编辑工具盒的pam序列，具有更宽更广的pam序列，其能广泛地应用于水稻基因组中靶标基因的敲除或单碱基的定向突变，以此创制基因功能失活或获得性突变体材料。尤其是碱基编辑系统在植物中的应用比通过hr的基因替换或通过nhej的基因插入更加有效和经济；而广泛的pam序列使得实现任意位点碱基替换的可能性加大，为植物研究领域科研人员提供一个重要的基因功能研究工具，并在水稻基因功能研究和分子育种方向上为培育水稻新品种提供了新的策略。
附图说明
54.图1显示了使用pubi:cas9ng在oscerk1基因靶位点处的编辑效果图。
55.图2显示了使用pubi:rbe22在osrlck185基因靶位点处的编辑效果图。
id no.22：gtcaccgcccaactgcga)为引物，以puc57:cas9ng为模板，利用i-5
tm2×
highfidelity master mix进行pcr扩增，获得约4.3kb的cas9ng基因的pcr片段，该片段经纯化后进行磷酸化处理，与上述4.0kb载体骨架进行连接，经转化、菌落pcr和酶切验证、测序验证后备用，获得的重组质粒命名为pbs:rbe22。
71.利用bamh i和spe i对pbs:rbe22进行双酶切并回收5.03kb的rbe22片段；利用bamh i和spe i对载体pubi:cas9ng进行双酶切并回收约12kb的载体骨架；将两者连接，经转化、菌落pcr和酶切验证后备用，获得的重组质粒命名为pubi:rbe22。
72.质粒pubi:rbe22的构成如下：camv35s启动子(genebank登陆号为fj362600.1，第10382至第11162核苷酸序列)，潮霉素基因(genebank登陆号为ky420085.1)，nos终止子(seq id no.14)，pvs1 repa(genebank登陆号为ky420084.1，第5755至第6435核苷酸序列)，pvs1复制起点(genebank登陆号为ky420084.1，第4066至第5066核苷酸序列)，attr1(genbank登陆号为kr233518.1，第2055至第2174核苷酸序列)，ccdb表达框genbank登陆号为kr233518.1，第3289至第3594核苷酸序列)，attr2(genbank登陆号为kr233518.1，第3635至第3759核苷酸序列)，ubip启动子(seq id no.12)，aid基因(seq id no.6)，cas9ng基因(seq id no.5)，ugi基因(seq id no.7)，nos终止子(seq id no.14)。
73.1.3 pubi:rbe23重组质粒构建
74.根据氨基酸序列seq id no.4确定用于在水稻中表达的基因序列seq id no.8，并人工合成如seq id no.8所示的1191bp的核苷酸序列，将其克隆至puc57上，命名为puc57:tada(由北京擎科新业生物技术有限公司完成)。
75.以puc57-f1(seq id no.23：gcgcgcttggcgtaatca)和tada-r1(seq id no.24：agccagaccaattgagtattttttgtc)为引物，以载体puc57:tada为模板，利用i-5
tm2×
highfidelity master mix进行pcr扩增，纯化后获得4.13kb的载体骨架；再以oscas9-fg1-f1(seq id no.21)和nls-r2(seq id no.25：cactagttcacccgccaac)为引物，以puc57:cas9ng为模板利用i-5
tm2×
highfidelity master mix进行pcr扩增，获得约4.3kb的cas9ng基因的pcr片段，纯化后进行磷酸化处理，与上述4.13kb载体骨架进行连接，经转化、菌落pcr和酶切验证后测序备用，获得的重组质粒命名为puc57:rbe23。
76.利用bamh i和spe i对puc57:rbe23进行双酶切并回收5.33kb的rbe23片段；利用bamh i和spe i对载体pubi:cas9ng并回收约12kb的载体骨架；然后将两者连接，经转化、菌落pcr和酶切验证后测序备用，获得的重组质粒命名为pubi:rbe23。
77.质粒pubi:rbe23的构成如下：camv35s启动子(genebank登陆号为fj362600.1，第10382至第11162核苷酸序列)，潮霉素基因(genebank登陆号为ky420085.1)，nos终止子(seq id no.14)，pvs1 repa(genebank登陆号为ky420084.1，第5755至第6435核苷酸序列)，pvs1复制起点(genebank登陆号为ky420084.1，第4066至第5066核苷酸序列)，attr1(genbank登陆号为kr233518.1，第2055至第2174核苷酸序列)，ccdb表达框genbank登陆号为kr233518.1，第3289至第3594核苷酸序列)，attr2(genbank登陆号为kr233518.1，第3635至第3759核苷酸序列)，ubip启动子(seq id no.12)，tada基因(seq id no.8)，cas9ng基因(seq id no.5)，nos终止子(seq id no.14)。
78.1.4 pentr4:sgrna的构建
79.按照从5’端到3’端的方向，将依次连接的u6启动子序列(seq id no.13)、含有两
no.29)为引物，利用i-5
tm2×
high fidelity master mix进行pcr扩增，获得393bp的pcr片段。该pcr产物再bamhⅰ酶解3h并利用琼脂糖凝胶电泳除去靶位点未被成功编辑的pcr产物，利用axyprep凝胶回收试剂盒回收靶位点发生碱缺失或插入的片段，连接ta克隆载体和sanger测序分析突变类型。如图1所示，随机测序获得了11个单克隆的序列，共检测到6种突变类型，分别为碱基缺失(-1、-2和-4bp)、碱基插入(+t和+a)以及碱基替换(g替换为a)，这表明cas9ng可识别nga pam基序完成基因编辑。
91.实施例3：利用pubi:rbe22进行水稻内源基因osrlck185的碱基c向t替换
92.osrlck185(loc_os05g30870)基因的转录序列和基因组序列从msu/tigr水稻基因组数据库中获得(http://rice.plantbiology.msu.edu/)。
93.对于osrlck185基因，设计含有与bsa i酶切位点末端连接匹配的靶核苷酸序列(seq id no.17：gtgcactgccaagctcacactgc，下划线为alw44 i酶切位点，加粗为pam序列)引物如下：gosrlck185-f1(seq id no.30：gtgtgtgcactgccaagctcacac)和gosrlck185-r1(seq id no.31：aaacgtgtgattggcagtgcac)。合成引物后，使用t4多聚核苷酸激酶将引物进行磷酸化处理，退火形成双链，将gosrlck185-f1/r1克隆到pentr4:sgrna载体的bsa i酶切位点中，测序确认插入片段完全正确，命名为pentr4:sgrna-gosrlck185。
94.其他操作同实施例2。
95.根据osrlck185基因的靶位点dna序列设计用于鉴定的特异性的pcr引物：osrlck185-f1(seq id no.32：tccatggccttgttcctctt)，osrlck185-r1(seq id no.33：tgctgctagacacatccaca)，pcr产物片段为484bp。首先利用alw44 i对原生质体基因组dna进行酶切消解2h，再以酶切产物为模板，以osrlck185-f1(seq id no.32)和osrlck185-r1(seq id no.33)为引物，利用i-5
tm2×
high fidelity master mix进行pcr扩增，获得484bp的pcr片段。该pcr产物再alw44 i酶解3h并利用琼脂糖凝胶电泳除去靶位点未被成功编辑的pcr产物，利用axyprep凝胶回收试剂盒回收成功替换靶位点碱基的片段，连接ta克隆载体和sanger测序分析突变类型。如图2所示，随机测序获得了10个单克隆的序列，均检测到靶碱基g突变为a，其中有3种突变类型，分别为g
4,6
》a、g
4,6,9
》a以及g
4,6,9,14
》a，这表明rbe22可识别ngc pam基序完成碱基编辑。
96.实施例4：利用pubi:rbe23进行水稻内源基因os03g02040的碱基a向g替换
97.os03g02040基因的转录序列和基因组序列从msu/tigr水稻基因组数据库中获得(http://rice.plantbiology.msu.edu/)。
98.对于os03g02040基因，设计含有与bsa i酶切位点末端连接匹配的靶核苷酸序列(seq id no.18：agatctagaggttggtctacgt，下划线为xba i酶切位点，加粗为pam序列)引物如下：gos03g02040-f1(seq id no.34：tgttgagatctagaggttggtcta)和gos03g02040-r1(seq id no.35：aaactagaccaacctctagatctc)。合成引物后，使用t4多聚核苷酸激酶将引物进行磷酸化处理，退火形成双链，将gos03g02040-f1/r1克隆到pentr4:sgrna载体的bsa i酶切位点中，测序确认插入片段完全正确，命名为pentr4:sgrna-gos03g02040。
99.其他操作同实施例2。
100.根据os03g02040基因的靶位点dna序列设计用于鉴定的特异性的pcr引物：os03g02040-f1(seq id no.36：cactagcacgacgcactttc)，os03g02040-r1(seq id no.37：agaacacgcgcatcatatc)，pcr产物片段为493bp。首先利用alw44 i对原生质体基因组dna进
行酶切消解2h，再以酶切产物为模板，以os03g02040-f1(seq id no.36)和os03g02040-r1(seq id no.37)为引物，利用i-5
tm2×
high fidelity master mix进行pcr扩增，获得493bp的pcr片段。该pcr产物再xba i酶解3h后利用琼脂糖凝胶电泳除去靶位点未被成功编辑的pcr产物，利用axyprep凝胶回收试剂盒回收成功替换靶位点碱基的片段，连接ta克隆载体和sanger测序分析突变类型。如图3所示，测序结果显示检测到靶碱基t突变为c，其中，这表明rbe23可识别ngt pam基序完成碱基编辑。